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| 论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 縮略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 研究现状、成果 | 第15-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-22页 |
| 一、癫痫发生的TrkB.FL信号通路抑制机制 | 第22-52页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-34页 |
| 1.1.1 实验动物及分组 | 第22-24页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第24页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.4 实验溶液的配置 | 第25-27页 |
| 1.1.5 体外大鼠海马神经元的原代培养和鉴定 | 第27-28页 |
| 1.1.6 大鼠海马神经元SREDs模型的制备和鉴定 | 第28-29页 |
| 1.1.7 抑制剂和BDNF孵育SREDs模型 | 第29-30页 |
| 1.1.8 SREDs模型中TrkB.FL信号通路的抑制机制 | 第30-34页 |
| 1.1.9 数据统计分析 | 第34页 |
| 1.2 结果 | 第34-47页 |
| 1.2.1 免疫荧光鉴定原代培养大鼠海马神经元的纯度 | 第34-35页 |
| 1.2.2 大鼠海马神经元SREDs模型的鉴定 | 第35-37页 |
| 1.2.3 TrkB受体亚型mRNA水平的表达变化 | 第37-38页 |
| 1.2.4 TrkB受体亚型蛋白水平的表达变化 | 第38-39页 |
| 1.2.5 钙蛋白酶下调模型中TrkB.FL受体表达 | 第39-41页 |
| 1.2.6 转录翻译过程上调模型中TrkB.T受体表达 | 第41-43页 |
| 1.2.7 TrkB.FL信号通路的活性在模型中被抑制 | 第43-45页 |
| 1.2.8 TrkB.T受体的高表达抑制模型中TrkB.FL信号通路的激活 | 第45-47页 |
| 1.3 讨论 | 第47-51页 |
| 1.3.1 大鼠海马神经元SREDs模型 | 第47页 |
| 1.3.2 调控TrkB受体亚型表达变化的机制探讨 | 第47-49页 |
| 1.3.3 TrkB.FL信号通路在模型中的抑制机制探讨 | 第49-51页 |
| 1.4 小结 | 第51-52页 |
| 二、miR-185~*激活TrkB.FL信号通路抑制痫样放电的机制 | 第52-81页 |
| 2.1 对象和方法 | 第53-60页 |
| 2.1.1 实验动物及分组 | 第53页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第53-54页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第54页 |
| 2.1.4 实验溶液的配置 | 第54-56页 |
| 2.1.5 大鼠海马神经元SREDs模型的构建 | 第56页 |
| 2.1.6 BDNF孵育神经元SREDs模型 | 第56页 |
| 2.1.7 miR-185~*调控TrkB.FL信号通路活性后对痫样放电的影响 | 第56-59页 |
| 2.1.8 翻译抑制剂调控TrkB.FL信号通路活性后对痫样放电的影响 | 第59页 |
| 2.1.9 数据统计分析 | 第59-60页 |
| 2.2 结果 | 第60-76页 |
| 2.2.1 miR-185~*转染SREDs模型和鉴定 | 第60-61页 |
| 2.2.2 miR-185~*下调TrkB.T受体mRNA的表达 | 第61-62页 |
| 2.2.3 miR-185~*下调TrkB.T受体蛋白的表达 | 第62-64页 |
| 2.2.4 miR-185~*激活模型中TrkB.FL信号通路 | 第64-65页 |
| 2.2.5 miR-185~*抑制VGCC电流及其通道特性 | 第65-71页 |
| 2.2.6 miR-185~*激活TrkB.FL信号通路抑制模型的痫样放电 | 第71-74页 |
| 2.2.7 翻译抑制剂激活TrkB.FL信号通路也可抑制痫样放电 | 第74-76页 |
| 2.3 讨论 | 第76-79页 |
| 2.3.1 miR-185~*调控TrkB.T受体表达的机制探讨 | 第76-77页 |
| 2.3.2 miR-185~*激活TrkB.FL信号通路抑制VGCC特性和痫样放电的机制探讨 | 第77-79页 |
| 2.4 小结 | 第79-81页 |
| 全文结论 | 第81-82页 |
| 论文创新点 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-92页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第92-93页 |
| 综述 | 第93-108页 |
| 综述参考文献 | 第104-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
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